医学实验手册
普略医学（百替生物）成立于2011年，是国内较早成立的转化医学研究技术服务公司。公司拥有八大转化医学研究技术平台，数十个技术实验室全部按国家或国际一流标准建设，仪器配置齐全。普略医学根据多年实验经验推出医学实验手册，助力基础医学科研！上期我们讲了动物的捉拿与固定，这一期我们来看看动物给药~~
灌胃给药
操作要点与注意事项：
（一）将动物固定成垂直体位，使其头、颈、身体成一条直线；
（二）灌胃前将动物禁食，以免动物灌胃后呕吐；
（三）灌胃针不可插入过深，一般插入小鼠3～4cm，大鼠4～6cm后即可注入药物；
（四）常用灌胃量：小鼠0.2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠1～5ml。
注射给药
皮下注射（H/SC）
剃去注射部位毛发并用酒精消毒，左手将皮肤提起，右手持注射器刺入皮下，针头轻轻左右摆动，易摆动说明已刺入皮下，然后缓慢地将药物注入皮下。推药过程中能明显观察到注射部位逐渐肿胀，注射完拔出针头后用无菌棉签压住进针部位片刻以免药物外漏。注射剂量大鼠一般小于1ml/100g，小鼠一般为0.1～0.3ml/10g。
皮内注射（id）
将药液注入皮肤的表皮和真皮之间，用于观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位毛发剃去，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间进行针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并稍刺入，将药液注入皮内，注射部位呈现小丘疹状隆起，且皮肤上的毛孔极为明显。如果注射时感觉比较费力，说明注射正确；如果感觉比较容易，说明已注入皮下，要拔出针头重新注射。注射剂量大鼠一般小于0.1ml/次，小鼠一般小于0.05ml/次。
肌肉注射（im）
肌肉注射一般在动物麻醉后进行，或者由两个人操作，一人固定动物，另一人执行注射。一般注射部位为大腿后侧肌肉。酒精消毒注射部位后，左手抓住后肢，右手持针插入肌肉，试着回抽针筒，如有血液或液体回流，表示不适当，需重新插入。确定针头插入肌肉后，慢慢将药剂推入，推入的速度应避免太快，以免组织损伤。大鼠注射量一般为0.1~0.5ml/100g，小鼠注射剂量一般为0.1~0.3ml/10g。
腹腔注射（ip）
以左手抓取并固定住动物，使腹部向上，右手将注射针头于下腹部刺入皮下，以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液。
（一）针头刺破腹肌后会有落空感，此时针头已进入腹腔，应停止进针以免针头刺入过深损伤内脏。
（二）为避免伤及内脏，应使动物处于头低位，使内脏移向上腹。
静脉注射（iv）
鼠尾静脉注射：鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张，并使表皮角质软化，用左手拇指、食指和无名指捏住并从下面托起尾巴，用无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器使针头与静脉平行（小于30°），从尾下四分之一处（约距尾尖2～3厘米）处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。
脑内注射
成年大小鼠颅骨较硬，注射前需进行颅脑开窗手术，常使用脑定位注射仪进行注射；幼鼠可用盲刺法进行注射，左手固定乳鼠俯卧于垫布上，酒精消毒注射部位，右手持注射器垂直刺入硬脑膜下，进针2～3mm，注入药液，注射完毕酒精消毒局部。
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医学实验手册：动物给药
发布时间：2020-04-28 18:27 文章来源：未知 作者：百替生物
医学实验手册
普略医学（百替生物）成立于2011年，是国内较早成立的转化医学研究技术服务公司。公司拥有八大转化医学研究技术平台，数十个技术实验室全部按国家或国际一流标准建设，仪器配置齐全。普略医学根据多年实验经验推出医学实验手册，助力基础医学科研！上期我们讲了动物的捉拿与固定，这一期我们来看看动物给药~~
灌胃给药
操作要点与注意事项：
（一）将动物固定成垂直体位，使其头、颈、身体成一条直线；
（二）灌胃前将动物禁食，以免动物灌胃后呕吐；
（三）灌胃针不可插入过深，一般插入小鼠3～4cm，大鼠4～6cm后即可注入药物；
（四）常用灌胃量：小鼠0.2～1ml，大鼠1～4ml，豚鼠1～5ml。
注射给药
皮下注射（H/SC）
剃去注射部位毛发并用酒精消毒，左手将皮肤提起，右手持注射器刺入皮下，针头轻轻左右摆动，易摆动说明已刺入皮下，然后缓慢地将药物注入皮下。推药过程中能明显观察到注射部位逐渐肿胀，注射完拔出针头后用无菌棉签压住进针部位片刻以免药物外漏。注射剂量大鼠一般小于1ml/100g，小鼠一般为0.1～0.3ml/10g。
皮内注射（id）
将药液注入皮肤的表皮和真皮之间，用于观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应，接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位毛发剃去，局部常规消毒，左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧，在两指之间进行针头穿刺，针头进入皮肤浅层，再向上挑起并稍刺入，将药液注入皮内，注射部位呈现小丘疹状隆起，且皮肤上的毛孔极为明显。如果注射时感觉比较费力，说明注射正确；如果感觉比较容易，说明已注入皮下，要拔出针头重新注射。注射剂量大鼠一般小于0.1ml/次，小鼠一般小于0.05ml/次。
肌肉注射（im）
肌肉注射一般在动物麻醉后进行，或者由两个人操作，一人固定动物，另一人执行注射。一般注射部位为大腿后侧肌肉。酒精消毒注射部位后，左手抓住后肢，右手持针插入肌肉，试着回抽针筒，如有血液或液体回流，表示不适当，需重新插入。确定针头插入肌肉后，慢慢将药剂推入，推入的速度应避免太快，以免组织损伤。大鼠注射量一般为0.1~0.5ml/100g，小鼠注射剂量一般为0.1~0.3ml/10g。
腹腔注射（ip）
以左手抓取并固定住动物，使腹部向上，右手将注射针头于下腹部刺入皮下，以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液。
操作要点与注意事项：
（一）针头刺破腹肌后会有落空感，此时针头已进入腹腔，应停止进针以免针头刺入过深损伤内脏。
（二）为避免伤及内脏，应使动物处于头低位，使内脏移向上腹。
静脉注射（iv）
鼠尾静脉注射：鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张，并使表皮角质软化，用左手拇指、食指和无名指捏住并从下面托起尾巴，用无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器使针头与静脉平行（小于30°），从尾下四分之一处（约距尾尖2～3厘米）处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。
脑内注射
成年大小鼠颅骨较硬，注射前需进行颅脑开窗手术，常使用脑定位注射仪进行注射；幼鼠可用盲刺法进行注射，左手固定乳鼠俯卧于垫布上，酒精消毒注射部位，右手持注射器垂直刺入硬脑膜下，进针2～3mm，注入药液，注射完毕酒精消毒局部。